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生物相容性MgAl-LDH负载Ru单原子纳米酶的高效自由基清除

2024/1/17 13:59:19  阅读:177 发布者:

1、文献题目

Atomization-Induced High Intrinsic Activity of a Biocompatible MgAl-LDH Supported Ru Single-Atom Nanozyme for Efficient Radicals Scavenging

文献期刊:Angew. Chem. Int. Ed.

10.1002/anie.202307133

2、文献作者

刘军枫,北京化工大学化学学院,化工资源有效利用国家重点实验室,教授,博士生导师。主要研究方向是无机功能纳米材料及其在催化、能源领域的应用。包括单原子催化剂、LDHs基纳米酶和抗氧化剂、金属有机框架(MOF)基催化材料、电催化氧还原、CO2还原、N2还原等新型催化材料。

3、文献提出的科学问题

由于传统纳米酶的活性不足,开发模拟天然酶清除活性自由基的有效纳米酶仍然存在重大的挑战。

4、分解为几个研究目标

1、研究了Ru1/LDHPOD酶活性,用密度泛函理论研究了Ru1/LDHH2O2氧化反应的途径。

2、通过多种测试考察了Ru1/LDHO2·、·OHNO·和DPPH·的清除能力。

3、进一步采用2′,7-二氯荧光素(DCFH-DA)作为荧光探针研究了Ru1/LDH在细胞内的抗氧化活性。

5、研究总体方案

报道了一种新的钌单原子纳米酶(SAE),其特征是在生物相容的镁铝层状双氢氧化物(Ru1/LDH)上原子分散的钌原子。所制备的Ru1/LDH SAE显示了高的内在过氧化物酶(POD)样催化活性,其性能是Ru纳米簇(NCs)纳米酶的20倍,并进一步考察对O2·、·OHNO·和DPPH·的清除能力以及在细胞内的抗氧化活性。

6、方法和技术手段

SEMTEMXPSXRDFT-IRUV-visDFTFluorescence microscopy

7、主要研究成果

1LDH的平均粒径约为40 nm,合成的Ru1/LDHMgAl-LDH在形态上没有明显的差异,也没有发现Ru NCsHRTEM图显示晶格间距为0.23 nm,对应于MgAl-LDH(015)晶面。在高角环形暗场扫描透射电子显微镜下观察到,Ru1/LDH中明显的单个亮点(红圈突出显示)为原子分散的单个Ru原子。相应的元素映射显示了MgAlRuLDH支架上的均匀分布,表明Ru原子均匀地分散在整个结构上。电感耦合等离子体原子发射光谱仪(ICP-AES)测定RuRu1/LDH中的质量负载为1.05 wt.%。进一步将Ru的负荷量增加到2.80 wt.%,形成了尺寸约为1.2 nmRu NCs。动态光散射(DLS)证实LDHRu1/LDHRu NCs/LDH的平均粒径约为40 nmLDHRu1/LDHRu NCs/LDH的ζ电位均为正。在Ru1/LDHRu NCs/LDHx射线衍射(XRD)图中,观察到一组属于MgAl-LDH (JPCDS No. 70-2151)的峰,但没有分配给Ru的信号,这可以归因于Ru1/LDHRu NCs/LDH中的低Ru负载。

2Ru1/LDHRu Kedge x射线吸收近边结构(XANES)光谱显示Ru原子的价态在+3 ~ +4之间,其吸收边略高于RuCl3,低于RuO2Ru NCs/LDH的吸收边略高于Ru箔,但远低于RuCl3,表明Ru NCs/LDHRu原子的价态接近于0Ru1/LDH的傅里叶变换扩展x射线吸收精细结构(FT-EXAFS)1.3 Å处呈现主峰,对应于Ru-O配位。在2.4 Å (Ru-Ru散射路径)处没有出现明显的峰,说明Ru是原子分散的。相反,Ru NCs/LDH2.4 Å处有一个主导峰,与Ru-Ru配位相对应。然后进行最小二乘EXAFS拟合,得到Ru位点的详细原子结构。最佳拟合结果表明,Ru1/LDH中的Ru原子与3O原子配位, Ru NCs/LDH中的Ru原子是与LDH载体的O原子连接的12个配位金属Ru。还进行了小波变换(WT)分析,因为它可以分离后向散射原子,并在Ru原子的Rk空间提供更高的分辨率。Ru1/LDH的最大强度位于5 Å-1,这是由于Ru-O配位。同时进行了x射线光子光谱(XPS)分析。在Ru1/LDHRu 3p光谱中,463.6 eV处有一个优势峰,可以归因于Ru(III),与XANES结果一致。此外,在Ru NCs/LDH中观察到一个属于Ru(0)的主导峰,表明Ru NCs/LDHRu的金属性质。Ru NCs/LDH中另外一个小的Ru(III)峰可能是由于Ru NCs/LDH中底层的Ru原子与LDH载体的O原子连接,增加了Ru价。

3、研究了Ru1/LDHPOD样活性。一种类似pod的酶可以在酸性介质中催化H2O2分解成O*。生成的O*3,3 '5,5 ' -四甲基联苯胺(TMB)进一步反应生成蓝色氧化TMB (oxTMB),在652nm处显示出最大吸光度。在反应溶液中加入LDH后,属于oxTMB的信号没有明显变化,说明纯LDHpod样活性较差。而加入Ru1/LDH后,信号急剧升高,且明显高于Ru NCs/LDH,说明Ru1/LDH具有更强的POD样活性。我们进一步根据米氏动力学研究了通过添加不同浓度的底物来确定Ru1/LDHPOD-样活性的参数。通过测量反应曲线的初始线性范围的斜率来确定初始速度。通过将计算的初始速度(V)对底物浓度作图,产生米氏曲线。为了揭示活性Ru位点的真实浓度,我们使用CO脉冲化学吸附来探测实际暴露的活性位点。结果显示,Ru1/LDHRu NCs LDH中暴露的Ru位点浓度分别为0.60 wt%0.89 wt%。催化反应速度在低底物浓度下线性增加,在较高底物浓度下达到平稳状态。使用H2O2作为底物时,Ru1/LDH显示出比Ru NCs/LDH(kcat/Km = 0.81×103S-1M-1)高约20倍的催化效率(kcat/Km = 1.69×104 S -1M-1)。当使用TMB作为底物时,Ru1/LDH还实现了更高的亲和力(Km = 0.121 mM)和催化效率(kcat/Km = 1.93×104 S -1M-1),证明了Ru1/LDH优异的内在POD-样活性。更重要的是,Ru1/LDH可以连续快速地去除过量的H2O2,同时在5分钟内氧化TMB,持续5个循环,证明了其高稳定性。

4、为了进一步了解Ru1/LDH的高内在类POD-催化活性,用密度泛函理论研究了Ru1/LDHH2O2氧化反应的途径。Ru1/LDH的模型是通过将单个Ru原子锚定在具有三个O原子的LDH的表面上而构建的。为了比较,考虑到32Ru原子的尺寸(1.2 nm)与制备的Ru NCs的平均尺寸一致,构建了LDH表面上的32Ru原子簇的模型来表示Ru NCs/LDHDFT结果表明Ru1/LDHRu NCs/LDH表面均可发生H2O2分子的自发解离过程。然而,H2O2会通过异裂途径在Ru1/LDH的单一Ru位点上解离成O*中间体和H2O分子。相比之下,H2O2将通过均裂途径在Ru NCs/LDHRu NC位点上解离成两个OH*基团。H2O2在单原子RuRu NC上如此不同的分解行为可以归因于单原子RuRu NC之间原子结构和前线分子轨道取向的差异。Bader电荷分析表明,与三个O原子成键的Ru单原子比Ru NC显示出更高的化合价,在叠层中从Ru到相邻O原子有0.9个电子转移。因此,Ru1/LDH中的Ru位点有利于形成更多缺电子的O*中间体,而不是OH*。此外,Ru1/LDH的最高占据分子轨道(HOMO )H2O2的最低未占据分子轨道(LUMO )对称不匹配,导致H2O2Ru1/LDH上的异裂路径解离。相比之下,Ru NCs/LDHHOMO可以与H2O2LUMO很好地匹配,导致H2O2HOMO裂解路径解离。还计算了相应的类POD-反应的自由能分布,以提供对催化机理的深入理解。H2O2Ru1/LDHRu NCs/LDH上的吸附和解离是高度放热的,自由能分别为4.62 eV4.95 eV。然而,随后的氢化和解吸过程是吸热过程,具有上坡自由能路径,自由能分别为0.43 eV0.63 eV,这意味着Ru1/LDH更有利于反应。上述理论研究清楚地支持Ru1/LDHRu NCs/LDH具有更高的类POD酶活性。

5SAE对多种活性氧和氮(ron)的清除能力也是其实际应用的重要因素。除H2O2外,还考察了Ru1/LDHO2·、·OHNO·和DPPH·的清除能力。O2·是另一种ROS,可以通过自突变或其他类型的反应转化为有毒的H2O2。为了维持细胞中的氧化还原平衡,多种酶,如SODCAT,可以共同作用,保护细胞免受氧化损伤。然后,我们通过抑制硝基蓝四氮唑(NBT)的光还原来检测Ru1/LDH清除O2·(SOD活性)的能力。在紫外线照射下,核黄素、蛋氨酸和NBT存在时,观察到560nm的强吸光度,提示O2·-的存在。一旦Ru1/LDH存在,信号显著减弱,表明O2·被Ru1/LDH有效清除。与LDHRu NCs/LDH相比,Ru1/LDH560 nm处吸光度最低,表明其对O2·的清除活性最高。此外,随着Ru1/LDH浓度的增加,清除能力增强。结果表明,Ru1/LDH通过催化O2·歧化生成H2O2O2,具有优异的类SOD活性。值得注意的是,O2·-消除过程中新生成的H2O2可以通过Ru1/LDH两种途径进一步分解为O* (POD)O2 (CAT),这取决于pH值。如上所示,Ru1/LDH在酸性介质中表现出高的POD样活性。因此,通过监测240 nmH2O2的吸光度,进一步评估碱性培养基中Ru1/LDHCAT活性。在Ru1/LDH存在的情况下,在240 nm处观察到明显的还原和清晰的气泡,表明H2O2分解。随着Ru1/LDH浓度的增加,催化能力增强。上述结果表明,Ru1/LDH也可以作为CAT类酶在碱性溶液中有效清除H2O2。在细胞代谢中,通常由类芬顿反应诱导的H2O2产生的高活性·OH会显著加剧氧化损伤。我们通过使用对苯二甲酸(TA)测定法进一步评估了Ru1/LDH的·OH清除活性。TA与·OH反应形成2-羟基对苯二甲酸(TAOH),其在440 nm处显示荧光发射。当加入Ru1/LDHRu NCs/LDH时,信号显著降低,表明H2O2分解原位产生的·OH被淬灭。此外,清除能力随着Ru1/LDH的增加而增强。显然,Ru1/LDH的降低的信号强度远大于Ru NCs/LDHLDH,表明其对·OH.具有更好的清除活性。此外,我们还评估了Ru1/LDHNO·清除活性。一氧化氮(NO·)是一种以氮为中心的自由基(NCR),在正常情况下发挥重要的生理作用,在疾病期间过量产生并诱导氧化应激。在此,NO·由硝普钠(SNP)在生理pH 7.4下产生,并通过Griess试剂反应定量。Griess试剂与NO·转化为亚硝酸盐反应后,在510 nm处表现出较强的吸收。在LDHRu NCs/LDHRu1/LDH存在时,吸收减弱,说明部分NO·被纳米酶清除。与NC/LDHLDH相比,Ru1/LDH的吸收率最低,表明其清除活性最高。此外,Ru1/LDH的清除能力随其浓度的增加而增强。在正常情况下,NO·是生物系统中重要的信号分子,因此,当·OH水平较高而NO·处于正常状态时,由于Ru1/LDH SAE对·OH的清除能力比NO·高得多,我们可以通过调节Ru1/LDH SAE的量,在不显著影响正常NO·水平的情况下实现·OH的清除。DPPH·(1,1-二苯基-2-吡啶肼基自由基)是另一种稳定的NCR,其清除能力已被广泛研究。Ru1/LDH清除DPPH·的活性通过对空白517 nm处的吸光度监测来评估。一旦加入Ru1/LDH,属于DPPH·的信号消失,说明DPPH·被Ru1/LDH有效清除。与LDHRu NCs/LDH相比,Ru1/LDHDPPH·的清除活性最高。吸光度值随着Ru1/LDH浓度的增加而降低,其表观颜色变化也证明了这一点。此外,Ru1/LDH可以重复使用,连续清除DPPH·,显示其清除活性的可持续性。

6、鉴于Ru1/LDH SAE具有较高的自由基清除活性和生物安全性,我们下一步研究了Ru1/LDH在细胞内的抗氧化活性。采用2′,7-二氯荧光素(DCFH-DA)作为荧光探针检测细胞内ROS水平。RAW264.7Rosup刺激下12 h观察到高荧光信号。添加LDHRu1/LDH后,荧光强度下降。值得注意的是,对于Ru1/LDH,荧光信号明显减弱,流式细胞术定量分析表明,近83%ROS可被有效消除。为了进一步证明Ru1/LDH SAE的稳定性,我们测试了Ru1/LDHRAW264.7细胞中清除自由基的时间依赖性活性。随着时间延长至24 h48 h, LDHRu1/LDH对细胞内ROS均表现出持续的清除活性,且细胞内ROS清除率随着时间的增加而逐渐增加。当时间延长至48 h时,Ru1/LDH仍能清除97%ROS,表明其在此条件下具有较高的稳定性。以上结果表明Ru1/LDH能够有效且持续地清除细胞内ROS。此外,纳米酶的生物相容性对细胞内应用也很重要。在RAW264.7细胞中加入Ru1/LDHLDH, 37℃孵育12 h后,细胞活力未见明显变化,说明Ru1/LDH具有良好的生物相容性和生物安全性。

8、作者给出结论

1、开发了一种多功能模拟酶Ru SAERu1/LDH SAE在清除H2O2方面表现出高的POD酶活性,这是由于与Ru NC上的均裂途径相比,在Ru的高价位上,其H2O2解离的自由能较低。

2Ru1/LDH还具有模拟多酶的能力,可以有效地清除O2·、H2O2,并快速清除·OHNO·和DPPH·。

3Ru1/LDH可以有效清除近97%的细胞内ROS,保护细胞免受氧化应激。

转自:“科研一席话”微信公众号

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