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中南大学蓝敏焕团队Chem. Biomed. Imaging:D-π-A结构半花菁聚集体用于近红外二区荧光成像引导的肿瘤光热治疗

2023/4/24 14:04:17  阅读:116 发布者:

英文原题:Aggregation Enhanced Photophysical Performance of D-π-A Structured Hemicyanine for NIR-II Fluorescent and Photoacoustic Imaging-guided Photothermal Therapy

通讯作者:蓝敏焕,中南大学化学化工学院,湖南省微纳米材料界面科学重点实验室;邓国伟,成都师范大学化学与生命科学学院,四川省功能分子结构优化与应用重点实验室。

作者:Baoling Li (李宝伶), E Pang (庞娥), Shaojing Zhao (赵少静), Shuodong Wang (王朔栋), Benhua Wang (王本花), Guowei Deng* (邓国伟), Jieyun Wu (吴杰云), Guangle Niu (牛广乐), Xiangzhi Song (宋相志), Minhuan Lan* (蓝敏焕)

背景介绍

高质量的成像对癌症的诊断和治疗有着巨大的应用前景。近红外(NIR-II区荧光成像是一种光学成像方式,能够实现高图像分辨率和实时监测,但存在组织穿透能力低的问题。光声(PA)成像技术以超声波为载体获取组织的光吸收信息,从而避免了光学散射造成的穿透深度不足的问题,突破了传统光学成像的限制(约1 mm),实现了深部组织的PA成像,深度可达7 cm。但PA成像分辨率低于荧光。因此,NIR-II区荧光和PA成像结合的双模态成像技术可以实现更高效的组织成像。

光热疗法(PTT)因其高选择性、非侵入性和氧气不依赖性的特点而受到广泛关注。NIR-II区荧光和PA成像引导的PTT可以实现对肿瘤的精确诊断和治疗。理想的光热治疗试剂应该具有较强的NIR吸收/荧光发射和较高的光热转换效率(PCE)。金属基纳米结构由于其强烈的等离子体共振,通常在NIR区域表现出高的PCE。然而,明显的细胞毒性和无荧光限制了它们的临床应用。碳纳米结构比金属基纳米结构表现出更好的生物相容性,但却存在生物降解较难,吸收波长较短的问题。相比之下,有机光热剂,如香豆素、荧光素、萘甲酰亚胺、罗丹明和氰化物衍生物,由于其良好的生物降解性、可修饰的分子结构和可调整的光学特性,被广泛用于荧光传感、生物成像和医学治疗等方面。有机光热剂之一吲哚菁绿(ICG)已被美国食品和药物管理局批准用于癌症的临床成像和光疗。然而,这种受体-π-受体(A-π-A)结构分子的光稳定性差,PCE和荧光量子产率低,吸收和荧光波长短。

然而,具有供体-π-受体(D-π-A)结构的分子含有电子供体和受体基团,以及大的π-共轭结构,因而可以通过分子内电荷转移(ICT),使其吸收和荧光光谱发生红移。以D-π-A结构为特征的半花菁染料,由于具有摩尔吸收系数高、斯托克斯位移大、生物相容性好、易于分子修饰、吸收和荧光波长可调等优点,被广泛地应用于荧光成像和生物标记。因此,通过调整电子供体和受体基团或扩大π-共轭结构,可以设计和合成NIR荧光的半花菁衍生物。然而,开发具有强NIR-II区荧光和高PCE的新型半花菁染料仍然是不易的。

文章亮点

近日,中南大学蓝敏焕教授团队设计合成了一种具有D-π-A结构的半花菁染料M1 NPs聚集体,用于近红外II区荧光和光声成像引导下的光热治疗,并发表在 Chem. Biomed. Imaging上。这种D-π-A结构的半花菁染料M1。在分子设计策略具有以下优点:iM1包含三个氰基作为电子受体,两个二乙基氨基作为电子供体,以及六个C=C键作为π-共轭系统。这种大的D-π-A结构的M1具有很强的ICT效应,表现出很强的近红外吸收和荧光,并且由于能隙定律而具有很高的PCEii) 具有强的拉电子基团,包括三个氰基和一个氯,可以有效地降低共轭结构中的电子密度,从而降低光氧化活性,并显著提高M1的光稳定性。环己烯和呋喃基团也增强了分子结构的刚性,进一步提高了M1的光稳定性;iii)环己烯上的叔丁基和呋喃上的两个甲基可以有效地阻止M1的π-π堆积,提高其荧光量子产率;iiii)两个NN-二乙基氨基苯基团可以自由旋转,从而改善M1的非辐射转换,提高其PCE

此外,单分子状态的M1相比,M1在水溶液中的聚集导致更好的光稳定性和更高的光热转换能力。聚集的M1可以隔离O2以减少激发态的氧化,从而导致比单分子更强的光稳定性。另一方面,聚集的M1的强分子间相互作用也促进了光热转换。因此,通过利用M1的聚集增强的光物理性能,用DSPE-PEG2000-NH2包裹疏水的M1,制备了水分散的NIR-II区荧光纳米粒子(M1 NPs)。M1 NPs表现出强烈的NIR I区吸收(734 nm)和NIR-II区荧光(1040 nm),具有306 nm的大斯托克斯位移。据测试,M1 NPs在水溶液中的荧光量子产率为2.84%,远远高于之前报道的NIR-II区荧光发色团,这使其具有出色的NIR-II区荧光成像能力。此外,M1 NPs表现出良好的生物相容性,良好的光稳定性,以及77.5%的高PCE,这些都优于临床使用的光诊疗剂ICG。体外实验结果显示,M1 NPs暴露在808 nm激光照射下产生的热量可以有效地抑制肿瘤细胞DNA的复制,并引发肿瘤细胞骨架的坍塌,从而诱导肿瘤细胞凋亡。基于其出色的PANIR-II荧光成像能力、高PCE、良好的生物相容性和光稳定性,M1 NPs被应用于PANIR-II荧光成像引导的PTT

1.  (A) M1 的基态(左)和激发态(右)的HOMO-LUMO 分布。 归一化的吸收和荧光光谱(B) M1 (THF)(C) M1 NPs(D) M1 NPs的扫描电镜照片。

使用密度函数理论(DFT)分析了M1的空间电子云分布。如图1A所示,HOMO的电子显示出非常相似的分布,主要是在基态(左)和激发态(右)的二乙氨基苯基单元上。相反,LUMO的电子显然在氰基取代的区域上是脱域的,这表明强烈的ICT。值得注意的是,分子构型,特别是二乙基氨基部分,显示出从基态到激发态的明显变化,导致M1的低的基态和激发态的能隙Eg和大的斯托克斯位移。Eg分别为1.88 eV1.76 eV

M1THF中的吸收和荧光峰值分别为714 nm1005 nm(图1B)。用DSPE-PEG2000-NH2包裹后,得到的水分散性M1 NPs显示出吸收和荧光光谱的红移,如图1C所示,其峰值分别在7341040 nm306纳米的大斯托克斯位移可能是由于聚集态中强烈的分子间D-A相互作用,进一步缩小了M1 NPsEgM1 NPs在水溶液中的荧光量子产率为2.84%。图1D所示的扫描电镜图像表明,M1 NPs具有均匀的球形形状,平均尺寸为100 nm,这有利于细胞的吸收。此外,动态光散射数据表明M1 NPs具有良好的粒径稳定性。

2.  时间依赖性的(A)不同激光功率和(B)不同浓度M1 NPs水溶液在激光辐照下的温度变化。(C)808nm激光照射下(1W/cm2),经过5次激光开/关循环后, M1 NPs水溶液、M1 NPs(DMSO)ICG水溶液的温度变化。(D) M1 NPs浓度依赖的PA强度变化。

光热转换能力是光热材料的一个重要参数。从图2A2B可以看出,M1 NPs水溶液的温度和激光功率及M1 NPs浓度是相关的。随着激光功率或M1 NPs浓度的升高,温度也随之升高。经过808 nm激光照射10分钟后,M1 NPs溶液的温度上升到64 ℃,计算出的M1 NPsPCE77.5%,这与金属基光热试剂相当。有趣的是,水溶液中的M1 NPsDMSO中的M1表现出更好的光稳定性和光热转换能力。如图2C所示,经过五个循环的激光照射,M1 NPs水溶液的温度保持在60 ℃以上,M1DMSO溶液的温度则保持在60 ℃以下,而ICG在经过几次光热循环后,温度明显降低,说明M1 NPs具有 比ICG有更好的光稳定性。由于其在近红外区域的高PCE和出色的光稳定性,M1 NPs表现出PA成像能力(图2D),并且PA强度与M1 NPs水溶液的浓度之间有很强的关联性。

3.  (A) M1 NPs浓度依赖性的细胞暗毒性和光毒性。不同处理后4T1细胞的(BCalcein-AM/PI染色和(CFITC标记的phalloidin染色的荧光成像。不同处理后的4T1细胞的(D)流式细胞术和(EEdU染色荧光成像。

通过MTT实验研究了M1 NPs的细胞暗毒性和光毒性。在没有激光照射的情况下,即使M1 NPs的浓度增加到10 μM4T1细胞的存活率仍在95%以上(图3A),表明M1 NPs具有良好的生物相容性。然而,暴露在1W/cm2808nm激光照射下10分钟,随着M1 NPs浓度的增加,细胞活力明显下降,在M1 NPs浓度为10 μM时,细胞活力还不到5%,表明M1 NPs的高光毒性。通过钙黄绿素-AM/碘化丙啶(Calcein-AM/PI)共染实验分析了M1 NPs4T1细胞的光毒性。如图3B所示,只有M1 NPs+激光组的细胞发出红色荧光,而其他三组的细胞则表现出强烈的绿色荧光。F-肌动蛋白(F-actin)是细胞骨架的重要组成部分,与细胞运动和生长密切相关。F-actin可被鬼笔环肽特异性染色,通过监测FITC标记的鬼笔环肽的绿色荧光来分析形态学变化。在M1 NPs+激光组的4T1细胞中,F-actin几乎被破坏,而三个对照组则表现为刚性的丝状结构(图3C),说明M1 NPs在激光照射下有效破坏了F-actin,抑制了4T1细胞的生长和增殖。图3D的流式细胞术结果也证实,M1 NPs可以有效地促进照射后的4T1细胞凋亡。M1 NPs+激光组显示42.67%的早凋和55%的晚凋,而其他三组没有显示明显的凋亡,意味着细胞死亡是由M1 NPs引起的凋亡。随后,通过5-乙炔-2-脱氧尿苷(EdU)染色评估M1 NPs4T1肿瘤细胞DNA复制的抑制作用。如图3E所示,只有M1 NPs+激光组没有显示绿色荧光,表明M1 NPs在激光照射下对4T1细胞增殖有极好的抑制作用。

4. 4T1荷瘤小鼠在808 nm激光照射照射下的(A)光声成像,(BNIR-II区荧光成像和(C)时间依赖性的温度变化。不同治疗组小鼠的肿瘤体积(D)和体重(E)随时间的变化。(F)不同治疗组的肿瘤的H&EKi67染色的切片。

高分辨率的图像对于精确诊断和准确引导肿瘤治疗是非常理想的。利用M1 NPs的高PCENIR-II区荧光发射的优势,进行了体内PANIR-II区荧光成像。图4A4B中分别清楚地观察到4T1肿瘤小鼠瘤内注射M1 NPs水溶液后,肿瘤区域的强烈PANIR-II区荧光。接下来,评估了M1 NPs的体内PTT疗效。肿瘤的温度由红外热成像仪记录。如图4C所示,M1 NPs+激光组的肿瘤温度在2分钟后迅速上升到50 ℃,之后维持在55 ℃左右。然而,生理盐水+激光组的温度只略有增加,表明M1 NPs在体内也表现出强大的光热转换能力。在接下来的14天里,对小鼠的肿瘤体积和体重进行了监测,以评估M1 NPs在体内的光热疗效。并且M1 NPs+激光组的肿瘤被完全消融,没有复发,而对照组的肿瘤体积则继续恶性增长(图4D)。此外,各组肿瘤小鼠的体重变化保持一致(图4E),进一步证明了M1 NPs的良好生物相容性。接下来,对不同治疗组的肿瘤进行剥离,用苏木精&伊红(H&E)和Ki67切片进行染色,以评估癌细胞的损伤和增殖情况。如图4F所示,只有M1 NPs+激光组的肿瘤切片显示细胞质间隙明显增加,表明PTT后肿瘤细胞损伤和增殖受到抑制。

总结/展望

综上所述,中南大学蓝敏焕教授研究团队制备了一种D-π-A结构的半花菁染料聚集体M1 NPs,证明了这种聚集体可以显著提高M1的光物理性能,包括更好的光稳定性和更高的光热转换能力。M1 NPs水溶液表现出强烈的近红外-I区吸收和近红外-II区荧光。M1 NPs能够通过良好的光热特性抑制肿瘤细胞的DNA复制并导致细胞骨架坍塌,诱导肿瘤细胞凋亡。基于这些优良的特性,证明了M1 NPsPANIR-II区荧光成像引导下的肿瘤PTT中的应用。这项工作为设计具有NIR-II荧光和高PCE的光热剂提供了一些思考。

相关论文发表在高质量期刊Chemical & Biomedical Imaging上,中南大学硕士研究生李宝伶和庞娥为文章的共一作者,蓝敏焕教授为通讯作者。

通讯作者信息

蓝敏焕 教授

个人简介:蓝敏焕, 男,博士,中南大学化学化工学院特聘教授,博士生导师。

2007年于中央民族大学毕业,获理学学士学位,2013年于中国科学院理化技术研究所毕业,获理学博士学位,并获中国科学院院长优秀奖。2013-2017年在香港城市大学超金刚石与先进薄膜研究中心(COSDAF)担任高级研究助理。主要从事有机、无机发光材料的设计、合成及在生物/环境等领域的应用(主要包括荧光探针、生物成像、光诊疗及光催化)。在Nat. Commun., J. Am. Chem. Soc., Adv. Mater., Nano Research, Chem. Commun. 等国际学术期刊发表研究论文80余篇,主持国家自然科学基金(青年、面上)、湖南省重点研发计划、深圳市科创委、中南大学创新驱动计划以及企业委托技术开发等项目10余项。

主页链接:

https://faculty.csu.edu.cn/lanminhuan/zh_CN/index/64935/list/index.htm

转自:ACS美国化学会”微信公众号

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